谷氨酸脱氢酶(GDH)位于动植物以及微生物体中,对于三羧酸循环的能量代谢、细胞内氧化还原平衡、氨含量的稳态维持和信号转导的调控起着至关重要的作用。它和谷氨酸合成酶(GOGAT)共同参与谷氨酸的合成,在氨同化和转化成有机氮化合物的代谢中起重要作用。本试剂盒提供了一种简单的比色法来检测生物样本中谷氨酸脱氢酶(GDH)活性。其原理是GDH催化NH4+、α-酮戊二酸和NADH,生成谷氨酸和NAD+,NADH在340nm处有特征吸收峰,NADH的消耗引起340nm吸光度下降。通过测定340nm吸光度的下降速率,计算GDH活性
试剂盒组分 | 规格 | 储存条件 | |
48T | 96T | ||
提取液 | 50mL | 100mL | 4℃保存 |
试剂一 | 10mL | 20mL | 4℃保存 |
试剂二 | 粉剂×1瓶 | 粉剂×2瓶 | 4℃保存 |
自备耗材
酶标仪或紫外分光光度计(能测 340nm处的吸光值)及恒温培养箱
96孔UV微孔板或微量石英比色皿、可调节式移液枪及枪头
离心机、制冰机
去离子水
匀浆器(如果是组织样本)
试剂准备
提取液:即用型; 4℃保存。
试剂一:即用型;使用前平衡到室温;4℃保存。
试剂二:临用前每瓶试剂二中加入10mL试剂一充分溶解混匀,现配现用(配好后12h内用完)。
样本制备
组织:称取约0.1g组织,加入1mL预冷的提取液,冰浴匀浆。8,000g 4℃离心10min,取上清,置冰上待测。
细菌或细胞:先收集500万细菌或细胞到离心管内,用冷PBS清洗细菌或细胞,离心后弃上清,加入1mL预冷的提取液,冰浴超声波破碎细菌或细胞5min(功率20%或200W,超声3s,间隔7s,重复30次),然后, 8,000g 4℃离心10min,取上清,置冰上待测。
血清(浆)等液体样本: 可直接测定。
注意:推荐使用新鲜样本,如果不立即进行实验,样本可在-80℃保存1个月。如需测定蛋白浓度,推荐使用BCA法蛋白质定量试剂盒,进行样本蛋白质浓度测定。
实验步骤
1. 酶标仪或可见光分光光度计预热30min以上,调节波长到340nm,可见光分光光度计去离子水调零。
2. 试剂二置于37℃(哺乳动物)或25℃(其它物种)水浴5min。
3. 样本测定:在96孔UV微孔板或微量石英比色皿中加入10μL样本和190μL试剂二,混匀,立即记录340nm处20s时的吸光值A1和5min20s后的吸光值A2,计算ΔA=A1-A2。
注意:实验之前建议选择2-3个预期差异大的样本做预实验。如果ΔA小于0.001可适当加大样本量。如果ΔA测大于0.5,样本可用提取液进一步稀释,计算结果乘以稀释倍数。
结果计算
A. 用 96 孔板测定的计算公式如下:
1.按样本鲜重计算:
单位的定义:每g组织在反应体系中每分钟消耗1nmol NADH定义为一个酶活力单位U。
GDH(U/g 鲜重)=[ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷(W×V样÷V样总)÷T=1286×ΔA÷W
2. 按液体体积计算:
单位的定义:每mL液体样本在反应体系中每分钟消耗1nmol NADH定义为一个酶活力单位U。
GDH(U/mL)=[ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷V样÷T=1286×ΔA
3. 按细菌或细胞数量计算:
单位的定义:每1万个细菌或细胞在反应体系中每分钟消耗1nmol NADH定义为一个酶活力单位U。
GDH(U/104 Cells)=[ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷(500×V样÷V样总)÷T=2.572×ΔA
4. 按样本蛋白浓度计算:
单位的定义:每mg组织蛋白在反应体系中每分钟消耗1nmol NADH定义为一个酶活力单位U。
GDH(U/mg prot)=[ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷(V样×Cpr)÷T=1286×ΔA÷Cpr
V反总:反应体系总体积,2×10-4 L;ε:NADH 摩尔消光系数,6.22×103 L/mol/cm;d:96孔板光径,0.5cm;109:1 mol=109 nmol;V样:加入样本体积,0.01mL;V样总:加入提取液体积,1mL;T:反应时间,5min;W:样本质量,g;500:细菌或细胞总数,500万个;Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL。
B. 使用微量石英比色皿测定的计算公式
将上述计算公式中光径 d:0.5cm 调整为 d:1cm 进行计算即可。
更新中...
答:可能的原因有:
1、胶浓度不对,不同浓度的胶跑出的蛋白条带的位置可能有所偏差,可以调整浓度;
2、抗体孵育不充分,建议增加抗体浓度,延长孵育时间;
3、酶失活,建议直接将酶和底物进行混合,如果不显色则说明酶失活了。选择在有效期内、有活性的酶联物;
4、目的蛋白存在翻译后修饰或剪切体,建议查询相关文献确定;
5、标本中不含靶蛋白或靶蛋白含量太低,建议设置阳性对照比对结果,增加标本上样量。
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