硫氧还蛋白过氧化物酶(TPX)检测试剂盒(微量法)
货号:PMK1026
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价格:
330.00
规格:
48T
96T
货期:
现货
-20°C避光保存12个月
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产品详情
  • 产品简介

    硫氧还蛋白过氧化物酶(TPX)属于过氧化物酶家族,在体内主要通过还原过氧化氢和一些氢过氧化物来实现抗氧化作用,功能与谷胱甘肽过氧化物酶(GPX)类似,也是谷胱甘肽氧化还原循环关键酶之一。TPX普遍存在于各种生物体内,如酵母、植物、动物、原生动物、寄生虫、细菌和古细菌,在进化上高度保守。TPX与细胞增殖、分化、细胞凋亡及肿瘤发生调控密切相关。TPX的主要功能包括细胞脱毒、抗氧化和调节由过氧化氢介导的信号转导和免疫反应。试剂盒提供了一种简单的检测方法检测生物样本,如血清(浆)、动物组织、细胞及细菌样本中TPX的活性。TPX催化H2O2氧化二硫苏糖醇(DTT),通过测定240 nmH2O2的吸收波长)吸光度的下降速率,用总活性减去过氧化氢酶(CAT)催化分解的H2O2,即可计算出TPX活性。本试剂盒可以同时测定样品TPXCAT活性。 

  • 产品内容

    image.png

  • 自备耗材

    酶标仪或紫外分光光度计(能测240 nm处的吸光度)及水浴锅

    96孔UV微孔或微量石英比色皿、可调节式移液枪及枪头

    低温离心机、制冰机

    去离子水

    匀浆器(如果是组织样本)


  • 试剂准备

    试剂一:即用型;室温保存。

    试剂二:即用型;使用前,平衡至室温;-20℃避光保存。

    试剂三:即用型;使用前,平衡至室温;4℃避光保存。


  • 样本制备

    物组织:称取约0.1g样本,加入1mL 试剂一,冰浴匀浆,8,000g4℃离心10min,取上清液,置冰上待测。

    细胞、细菌:收集500万细胞或细菌到离心管内,用冷PBS清洗细胞,离心后弃上清,加入1mL 试剂一,冰浴超声波破碎细胞或细菌5min(功率20%或200 W,超声3s,间隔7s,重复30次),然后8,000g,4℃离心10min,取上清液,置冰上待测。

    血清等液体的准备:直接测定

    注意:1. 推荐使用新鲜样本,如果不立即进行实验,样本可在-80℃保存1个月样品处理等过程均需要在冰上进行,且须在当日测定酶活力,匀浆液避免反复冻融

    2, 细胞中TPX活性测定时,细胞数目须在3-5×106之间,细胞中TPX的提取时可加试剂一匀浆或超声波处理,不能用细胞裂解液处理细胞。

    3. 如需测定蛋白浓度,推荐使用BCA法蛋白质定量试剂盒,进行样本蛋白质浓度测定。


  • 实验步骤

    1.酶标仪或紫外分光光度计预热30min以上,调节波长至240nm,紫外分光光度计去离子水调零。

    2.试剂一试剂二置于 25(一般物种)或者 37(哺乳动物)预热30min。

    3.样本测定:96孔UV板或微量石英比色皿中加样,每孔先加入4μL样本上清液,再加入180μL 试剂一CAT活性测定)或 180μL 试剂二(总活性测定),后加入16μL试剂三充分混匀。测定240nm处的吸光值,分别记录10s和130s吸光值,CAT活性记为A1A2总活性测定记为A3A4

    注意:1. 实验之前建议选择 2-3 个预期差异大的样本做预实验。

    2. 测定反应的温度对测定结果有影响,请控制在25℃(一般物种)或者37℃(哺乳动物)。

    3. 因通过反应速率计算酶活,使用96孔UV板时请根据操作速度控制一次测定的样本数(通常一次测定4-8个样本


  • 结果计算

    A. 使用96孔UV微孔板测定的计算公式如下

    (1) 按蛋白浓度计算

    活性单位(U)定义:25℃或者 37℃中,每毫克蛋白每分钟催化1nmol H2O2降解1个酶活单位

    CAT活性(U/mg prot)=(A1-A2)÷(ε×d)×V反总÷(Cpr×V) ÷T=1147×(A1-A2)÷Cpr

    总活性(U/mg prot)=(A3-A4)÷(ε×d)×V反总÷(Cpr×V)÷T=1147×(A3-A4)÷Cpr

    TPX 活性(U/mg prot)=总活性-CAT活性

    2)按样本鲜重计算

    活性单位(U)定义: 25℃或者 37℃中,每克样品每分钟催化1nmol H2O2降解1个酶活单位

    CAT活性(U/g 鲜重)=(A1-A2)÷(ε×d)×V反总÷(V÷V样总×W)÷T=1147×(A1-A2)÷W

    总活性(U/g 鲜重)= (A3-A4)÷(ε×d)×V反总÷(V÷V样总×W)÷T=1147×(A3-A4)÷W

    TPX 活性(U/g 鲜重)=总活性-CAT活性

    3)细胞数量计算

    活性单位(U)定义:25℃或者 37℃中,每104个细胞每分钟催化1nmol H2O2降解1个酶活单位

    CAT活性(U/104 cells)= (A1-A2)÷(ε×d)×V反总÷(500×V÷V样总)÷T=1147×(A1-A2)÷500=2.294×(A1-A2)

    总活性(U/104 cells)=(A3-A4)÷(ε×d)×V反总÷(500×V÷V样总)÷T=1147×(A3-A4)÷500=2.294×(A3-A4)

    TPX 活性(U/104 cell)=总活性-CAT活性

    4)按液体体积计算

    活性单位(U)定义:25℃或者 37℃中,每毫升液体每分钟催化催化1nmol H2O2降解1个酶活单位

    CAT活性(U/mL)=(A1-A2)÷(ε×d)×V反总÷V÷T=1147×(A1-A2)

    总活性(U/mL)=(A3-A4)÷(ε×d)×V反总÷V÷T=1147×(A3-A4)

    TPX活性(U/mL)=总活性-CAT活性

    ε: H2O2摩尔消光系数,43600 L/mol/cm=0.0436 mL/nmol/cm; d:96孔板光径,0.5cm;V反总:反应体系总体积,200μL=0.2mL;Cpr:上清液蛋白质浓度,mg/mL; W:样品质量,0.1g;V:加入反应体系中上清液体积,4μL = 4×10-3 mL; V样总:提取液体积,1mL;T:反应时间,2min; 500:细胞数量, 5×106

    B. 使用微量石英比色皿进行测定的计算公式

    将上述计算公式中光径 d:0.5cm 调整为 d:1cm 进行计算即可。


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Product Q&A FAQ
产品问答FAQ
  • Western Blot(WB)实验中蛋白条带位置(大小)不对咋整?

    答:可能的原因有:

    1、胶浓度不对,不同浓度的胶跑出的蛋白条带的位置可能有所偏差,可以调整浓度;

    2、抗体孵育不充分,建议增加抗体浓度,延长孵育时间;

    3、酶失活,建议直接将酶和底物进行混合,如果不显色则说明酶失活了。选择在有效期内、有活性的酶联物;

    4、目的蛋白存在翻译后修饰或剪切体,建议查询相关文献确定;

    5、标本中不含靶蛋白或靶蛋白含量太低,建议设置阳性对照比对结果,增加标本上样量。


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