使用本试剂盒，采用常规染色脱色方法累计时间达到2-3小时后可以观察到蛋白条带；采用快速染色脱色方法20分钟左右即可观察到蛋白条带。观察到清晰的蛋白条带则需染色脱色更长时间。本试剂盒中的染色液和脱色液经过改良，不含有毒的甲醇，但含有刺激性气味的乙酸

1. 常规染色脱色方法：

a. 电泳结束后，取凝胶放入适量考马斯亮蓝染色液中，确保染色液可以充分覆盖凝胶。

b. 置于水平摇床或侧摆摇床上缓慢摇动，室温染色1小时或更长时间。具体的染色时间取决于凝胶的厚度和染色时的温度。

c. 倒出染色液。染色液可以回收重复使用至少2-3次。

d. 加入适量考马斯亮蓝染色脱色液，确保脱色液可以充分覆盖凝胶。

e. 置于水平摇床或侧摆摇床上缓慢摇动，室温脱色4-24小时。期间更换脱色液2-4次，直至蓝色背景基本上全部被脱去，并且蛋白条带染色效果达到预期。通常蛋白条带在脱色1-2小时后即可出现。

f. 完成脱色后，可以把凝胶保存在水中，用于后续的拍照等。保存在水中的凝胶会发生溶涨。如需避免溶涨，可以把胶保存在含20%甘油的水中。长期保存可以制备干胶。

2. 快速染色脱色方法：

a. 电泳结束后，取胶放入适量考马斯亮蓝染色液中，微波炉加热至接近沸腾或刚刚沸腾，立即停止加热。

通常对于胶浓度大于10%的胶比较坚韧，在发生煮沸时不易破损；对于胶浓度小于10%的胶，宜尽量避免煮沸，以免出现胶碎裂的情况。

b. 随后在染色液温度较高的情况下，在室温摇床上摇动5-10分钟。

c. 倒出染色液。染色液可以回收重复使用至少2-3次。

d. 加入适量考马斯亮蓝染色脱色液，确保染色液可以充分覆盖凝胶。

e. 微波炉加热至接近沸腾或刚刚沸腾，立即停止加热。

f. 随后在脱色液温度较高的情况下，在摇床上摇动5-10分钟。此时通常可以观察到比较清楚的蛋白条带。

g. 更换新鲜的脱色液，重复步骤e和步骤f，直至蓝色背景基本上全部被脱去，蛋白条带染色效果达到预期。

h. 完成脱色后，可以把凝胶保存在水中，用于后续的拍照等。保存在水中的凝胶会发生溶涨。如需避免溶涨，可以把胶保存在含20%甘油的水中。长期保存可以制备干胶。

1.可以使用枪头盒或适当大小的培养皿作为染色和脱色的容器。

2.本染色液和脱色液呈酸性，有轻微腐蚀性，使用时请作必要防护

3.为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。

4.本产品仅限于专业人员的科学研究用，不得用于临床诊断或治疗，不得用于食品或药品，不得存放于普通住宅内。