本试剂盒用于从哺乳动物组织和培养细胞中提取胞质蛋白，用裂解液匀浆裂解组织或细胞 ，作用温和，提取过程简便高效，可快速获得胞质蛋白。 获得的总蛋白可用于报告基因检测、蛋白质纯化、Western Blot、免疫共沉淀等后续研究 ，但不能用于蛋白激酶及磷酸酶的研究 ，因本试剂盒中包括这两种酶的抑制剂。

组织胞质蛋白的提取
1.提取液的用量和配制：每0.1g组织需要0.75-1ml胞质蛋白提取液；每1ml冷的胞质蛋白提取液中加入20ul磷酸酶抑制剂混合物、10ul蛋白酶抑制剂混合物和10ul PMSF混匀，放置在冰上备用；
2. 称取新鲜组织，放置于玻璃匀浆器的入口缓冲处，用眼科剪将组织块尽可能剪碎，然后加新配置的胞质蛋白提取液，研磨直至没有明显的组织块，这个过程注意冰上操作；
3. 将组织匀浆液移入1.5ml 预冷的EP 管中，高速涡旋振荡5秒，4℃ 12000 g 离心10min；
4. 吸取上清至新的预冷的离心管中，即为胞质蛋白提取物；
5. 进行蛋白定量或者变性进行蛋白实验 。( 提取好的蛋白建议保存于-80℃，即用即取，避免反复冻融，避免长时间储存)

  细胞胞质蛋白的提取
1. 提取液的用量和配制：107个细胞需要0.75-1ml胞质蛋白提取液；每1ml的冷的胞质蛋白提取液中加入20ul的磷酸酶抑制剂混合物、10ul蛋白酶抑制剂混合物和10ul PMSF混匀，放置在冰上备用；
2. 贴壁细胞：弃去培养基，加入冷的PBS清洗，弃去PBS后加入胰酶消化液消化30s-2min，4℃1200g离心10min收集细胞，再用冷的PBS清洗一次，后按细胞数加入胞质蛋白提取液，涡旋10s，放置冰上裂解10min，重复2-3次；
3. 悬浮细胞： 4℃ 500g~800g离心10min收集细胞，再用预冷的PBS洗两次细胞，500g~800g离心去上清。按细胞数加入胞质蛋白提取液，涡旋10s，放置冰上裂解10min，重复2-3次；
4. 裂解完毕之后，将细胞裂解液4℃12000g离心10min，取上清为胞质蛋白提取物；
5. 将上清移入新的EP管中，进行蛋白定量或者变性进行蛋白实验。(提取好的蛋白建议保存于-80℃，即用即取，避免反复冻融，避免长时间储存)