产品简介
游离胆固醇(FC)是构成细胞膜的主要成分,也是合成肾上腺皮质激素、性激素、胆汁酸及维生素D等生理活性物质的重要原料。组织游离胆固醇(FC)浓度可作为脂代谢的指标。本试剂盒提供了一种简单的检测方法,用于检测生物样本如动物组织、细胞(细菌)、血清(浆)中游离胆固醇(FC)的含量。胆固醇氧化酶催化游离胆固醇(FC)生成△4-胆甾烯酮和H2O2,过氧化物酶催化H2O2、4-氨基安替比林和酚生成红色醌类化合物,在500nm有吸收峰,其颜色深浅与FC含量成正比。
产品内容
试剂盒组分 | 规格 | 储存条件 | ||
48T | 96T | |||
试剂一 | 7.5mL | 15mL | 4℃避光保存 | |
试剂二 | 1 | 1 | -20℃避光保存 | |
试剂三 | 5mL | 10mL | 4℃保存 | |
标准品 | 0.25mL | 0.5mL | 4℃避光保存 | |
标准品稀释液 | 5mL | 10mL | 4℃保存 |
自备耗材
酶标仪或可见分光光度计(能测500nm处的吸光度)
恒温箱、制冰机、低温离心机
96孔板或微量玻璃比色皿、可调节式移液枪及枪头
异丙醇、去离子水
匀浆器(如果是组织样本)
试剂准备
试剂一:即用型;使用前,平衡到室温;4℃避光保存。
试剂三:即用型;使用前,平衡到室温;4℃保存。
标准品稀释液:即用型;使用前,平衡到室温;4℃保存。
试剂二:临用前96T加入5mL 试剂三,48T加入2.5mL 试剂三充分混匀待用。用不完的试剂可4℃保存一周或分装后-20℃保存,禁止反复冻融。
标准品:含5mmol/L 胆固醇标准品;4℃避光保存。
工作液的配制:每孔配制200µL工作液:吸取50µL溶解后的试剂二,150µL试剂一。工作液需现配现用,根据需要测定的样本数按比例配制。
标准曲线设置:按下表所示,用标准品稀释液将5mmol/L 胆固醇标准品稀释为5、2.5、1.25、0.625、0.313、0.156、0.078、0 mmol/L 的标准溶液。
标准品体积 | 标准品稀释液体积(µL) | 标准品浓度(mmol/L) | |
Std.1 | 100µL 5mmol/L | 0 | 5 |
Std.2 | 50µL of Std.1 (5mmol/L) | 50 | 2.5 |
Std.3 | 50µL of Std.2 (2.5mmol/L) | 50 | 1.25 |
Std.4 | 50µL of Std.3 (1.25mmol/L) | 50 | 0.625 |
Std.5 | 50µL of Std.4 (0.625mmol/L) | 50 | 0.313 |
Std.6 | 50µL of Std.5 (0.313mmol/L) | 50 | 0.156 |
Std.7 | 50µL of Std.6 (0.156mmol/L) | 50 | 0.078 |
Std.8 | 0 | 100 | 0 |
注意:每次实验都需要新配制标准品。
样本制备
动物组织:称取约0.1g样本,加入1mL异丙醇,冰浴匀浆,8,000g,4℃离心10min,取上清液,置冰上待测。
细胞或细菌:收集500万细胞或细菌到离心管内,用冷PBS清洗细胞,离心后弃上清,加入1mL 异丙醇,冰浴超声波破碎细胞或细菌5min(功率20%或200W,超声3s,间隔7s,重复30次),8,000g,4℃离心10min,取上清液,置冰上待测。
血清(浆):直接测定。
注意:推荐使用新鲜样本。如果不立即使用,可将样品在-80℃下保存6个月。
实验步骤
1. 酶标仪或可见分光光度计预热30min以上,调节波长到500nm,可见分光光度计去离子水调零;恒温箱预热到37℃。工作液在37℃中预热30min以上。
2.样本游离胆固醇(FC)含量测定(在96孔板或微量玻璃比色皿中依次加入下列试剂):
标准(μL) | 测定(μL) | |
不同浓度标准品 | 20 | 0 |
样本 | 0 | 20 |
工作液 | 200 | 200 |
2. 混匀,37℃静置 30min,测定 500nm 处吸光值 A。标准孔记为A标,测定孔记为A测。
注意:实验之前建议选择2-3个预期差异大的样本做预实验。如果A测大于2.0,样本可用异丙醇进一步稀释,计算结果乘以稀释倍数,或减少提取用样本量。
结果计算
1. 标准曲线的绘制
所有孔吸光值 A减去零浓度(Std.8)的吸光值得ΔA。
以标准液浓度为y轴,ΔA标为x轴,绘制标准曲线(浓度为y轴更方便计算结果)。将ΔA测带入方程得到y值(mmol/L即μmol/mL)。
2. 样本游离胆固醇(FC)含量计算
(1)按样本质量计算
FC含量(μmol/g 质量)=y×V样÷(W×V样÷V样总) ×n=y÷W×n
(2)按细菌或细胞数量计算
FC含量(μmol/104 cells)==y×V样÷(细胞数量×V样÷V样总)×n=y÷500×n=0.002×y×n
(3)按液体体积计算
FC含量(μmol/mL)=y×V样÷V样×n=y×n
V样:加入样本体积,0.02mL;W:样本质量,g;V样总:加入提取液体积,1mL;n:样本稀释倍数; Cpr:样本蛋白浓度,mg/mL;500:细胞数量,500万。
结果展示
典型标准曲线-数据和曲线仅供参考,实验者需根据自己的实验建立标准曲线