产品简介
动植物及微生物的细胞内外都存在明显的Na+、K+梯度差,细胞内是高K+低Na+,细胞外则是高Na+低K+,这显然是Na+、K+逆浓度梯度主动运输的结果,执行这种运输功能的体系称为Na+K+-离子泵,它利用水解ATP获取能量,推动K+吸收和Na+的排出,因此又叫Na+K+-ATP泵或Na+K+-ATP酶。Na+K+-ATP酶(Na+K+-ATPase)是一种广泛分布于机体内生物膜系统的酶,在细胞生理学中发挥多种功能,可催化ATP水解生成ADP和无机磷。本试剂盒提供了一种简单的检测方法检测生物样本中Na+K+-ATPase的活性水平。其原理是样本中存在的Na+K+-ATPase分解ATP生成ADP及无机磷,通过测定生成的无机磷的量可确定Na+K+-ATPase活性。
产品内容
试剂盒组分 | 规格 | 储存条件 | |
48T | 96T | ||
提取液 | 50mL | 100mL | 4℃ |
反应缓冲液 | 5mL | 10mL | 4℃ |
试剂一 | 1 | 1 | -20℃避光保存 |
试剂二 | 1mL | 2mL | 4℃ |
试剂三 | 1 | 1 | 4℃避光保存 |
试剂四 | 1 | 1 | 4℃避光保存 |
试剂五 | 1 | 1 | 4℃避光保存 |
试剂六 | 25mL | 25mL | 4℃ |
试剂七 | 5mL | 10mL | 4℃ |
自备耗材
酶标仪或可见光分光光度计(能测660nm处的吸光度)及水浴锅
96孔板或微量玻璃比色皿、可调节式移液枪及枪头
制冰机、低温离心机
去离子水
匀浆器(如果是组织样本)
试剂准备
提取液:即用型;使用前,平衡到室温;4℃保存。
反应缓冲液:即用型;使用前,平衡到室温;4℃保存。
试剂一:临用前加6mL去离子水溶解;-20℃避光保存。
试剂二:即用型;使用前,平衡到室温;4℃保存。
试剂三:临用前加3mL去离子水溶解;4℃避光保存。
试剂四:临用前加25mL去离子水溶解;4℃避光保存。
试剂五:临用前加25mL去离子水溶解;4℃避光保存。
试剂六:即用型;使用前,平衡到室温;4℃保存。
0.5μmol/mL标准磷应用液配制:将试剂七20倍稀释,如取0.1mL 试剂七加1.9mL去离子水充分混匀。
定磷剂的配制:按H2O: 试剂四: 试剂五: 试剂六=2:1:1:1的比例配制,配好的定磷剂应为浅黄色。若无色则试剂失效,若是蓝色则为磷污染,定磷剂现配现用。
注意:试剂四、试剂五溶解后可在4℃保存一周。配试剂最好用新的烧杯、玻璃棒和玻璃移液器,也可以用一次性塑料器皿避免磷污染。
样本制备
血浆、血清等液体样本:可直接检测。
动植物组织样本:按0.1g组织加入1mL 的提取液的比例进行冰浴匀浆。匀浆液于4℃,8,000g离心10 min。取上清,置于冰上待测。
细胞或细菌样本:收集500万细胞或细菌到离心管内,用冷PBS清洗细胞,离心后弃上清,加入1mL 提取液,冰浴超声波破碎细胞或细菌5min(功率20%或200W,超声3s,间隔7s,重复30次);然后4℃,8,000g离心10min,取上清,置冰上待测。
注意:推荐使用新鲜样本,如果不立即进行实验,样本可在-80℃保存1个月。处理好的样本须当天检测。
如需测定蛋白浓度,推荐使用BCA法蛋白质定量试剂盒进行样本蛋白质浓度测定。
实验步骤
1.酶标仪或可见光分光光度计预热30min以上,调节波长至660nm,可见光分光光度计去离子水调零。
2.酶促反应(在EP管中加入下列试剂):
试剂 | 对照管(μL) | 测定管(μL) |
反应缓冲液 | 65 | 45 |
试剂一 | 60 | 60 |
试剂二 | 0 | 20 |
样本 | 0 | 100 |
混匀,置于37℃(哺乳动物)或25℃(其他物种)水浴锅准确反应10min | ||
试剂三 | 25 | 25 |
样本 | 100 | 0 |
混匀,4,000g,常温离心10min,取上清液 |
3.定磷(96孔板或微量玻璃比色皿中加入下列试剂)
试剂 | 空白孔(μL) | 标准孔(μL) | 对照孔(μL) | 测定孔(μL) |
0.5μmol/mL标准磷应用液 | 0 | 20 | 0 | 0 |
上清液 | 0 | 0 | 20 | 20 |
去离子水 | 20 | 0 | 0 | 0 |
定磷剂 | 200 | 200 | 200 | 200 |
4. 混匀,室温放置30min,在 660nm处,记录各管吸光值A,分别记为A空白、A标准、A对照、A测定。
注意:每个样本均需要做对照孔,空白孔和标准孔各做1个即可。实验之前建议选择 2-3 个预期差异大的样本做预实验。如果A测定-A对照小于0.001可适当加大样本量;如果A测定-A对照大于1.5或测定孔有明显浑浊,样本可用提取液进一步稀释,计算结果乘以稀释倍数,或减少提取用样本量。
结果计算
血清(浆)等液体样本Na+K+-ATPase活力的计算:
活性单位的定义:每小时每毫升液体样本中Na+K+-ATPase在反应体系中分解ATP产生1μmol无机磷的量定义为一个酶活力单位。
Na+K+-ATPase活力(U/mL)=C标准×(A测定-A对照)÷(A标准-A空白)×V反总÷V样÷T=7.5×(A测定-A对照)÷(A标准-A空白)
2、组织、细菌或细胞中Na+K+-ATPase活力的计算:
(1)按蛋白浓度计算:
活性单位的定义:每小时每毫克组织蛋白中Na+K+-ATPase在反应体系中分解ATP产生1μmol无机磷的量定义为一个酶活力单位。
Na+K+-ATPase活力(U/mg prot)=C标准×(A测定-A对照)÷(A标准-A空白)×V反总÷(Cpr×V样)÷T
=7.5×(A测定-A对照)÷(A标准-A空白)÷Cpr
(2)按样本鲜重计算:
活性单位的定义:每小时每克组织中Na+K+-ATPase在反应体系中分解ATP产生1μmol无机磷的量定义为一个酶活力单位。
Na+K+-ATPase活力(U/g)=C标准×(A测定-A对照)÷(A标准-A空白)×V反总÷(V样÷V样总×W)÷T
=7.5×(A测定-A对照)÷(A标准-A空白)÷W
(3)按细菌或细胞密度计算:
活性单位的定义:每小时每1万个细菌或细胞中Na+K+-ATPase在反应体系中分解ATP产生1μmol无机磷的量定义为一个酶活力单位。
Na+K+-ATPase活力(U/104 cells)=C标准×(A测定-A对照)÷(A标准-A空白)×V反总÷(V样÷V样总×500)÷T
=0.015×(A测定-A对照)÷(A标准-A空白)
C标准:标准管浓度,0.5μmol/mL;V反总:酶促反应总体积,0.25mL;V样:加入样本体积,0.1mL ;V样总:加入提取液体积,1mL;T:反应时间,1/6 小时;Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL;W:样本鲜重,g;500:细菌或细胞总数,500万个。
注意事项
1. 实验过程中请穿戴实验服、口罩和乳胶手套。请按照生物实验室的国家安全规定进行实验,尤其是在检测血样或其他体液时。
2. 本试剂盒仅用于实验室科学研究,如果本试剂盒用于临床诊断或任何其他用途,我们将不对任何后果负责。
3. 本试剂盒应在有效期内使用,并请严格按照说明书进行存储。
4. 不同批次号、不同厂家之间的组分不要混用;否则,可能导致结果异常。
5. 勤换吸头,避免各组分之间的交叉污染。